1.3 Средства и методы регуляции численности мух
Известно, что успешное ограничение численности вредных насекомых, в том числе и мух возможно лишь при интеграции различных методов борьбы с ними, причем основу этой комплексной системы должны составлять экологические приемы (санитарно-хозяйственные мероприятия) в сочетании с химическими и биологическими мероприятиями.
В СССР (СНГ) под руководством К.П. Андреева (1966) проведены значительные работы по изысканию эффективных методов и средств ограничения численности мух в животноводческих комплексах, свинофермах, коровниках и телятниках. В последствии в 1970 – 1980 гг планомерные исследования систем мероприятии против зоофильных мух в животноводческих комплексах и фермах осуществлены Г.Е Веселкиным (1990)
Высокоэффективное комплексное мероприятие – одновременная регуляция численности преимагиальных стадии и взрослых насекомых. В настоящее время в литературе накоплен большой материал, показывающий эффективность подавления численности мух путем уничтожения их личинок. Эти сведения отражены как в ранних, так и в более поздних публикациях таких как Городецкий А.С. и Сухов М.Н. (1936), Городецкий и Гречко (1941), Веселкин Г.А. (1990). Для уничтожения личинок и куколок мух Непоклонным А.А. (1968) предложен 10 % - ный масляный раствор полихлорпинена, 20 % - ная водная эмульсия нафтализола, 0,1 % - ная водная эмульсия трихлорметафоса – 3, 0,5 – 1 % - ная эмульсия карбофоса, из расчета 2 – 5 л/м² субстрата. В.А. Поляков, У.Я. Узаков рекомендуют для деларвации биологические средства: 1 – 3 % - ный водный раствор турингина – 1, 3 % - ные водные суспеннзии битоксибацилина или виоцида. Также для борьбы с личинками мух предложено вскармливание животным инсектицидов, в частности аналога ювенильного гормона метапрена и подкожные иньекции биологического инсектицида ивермектина.
В лабораторных и полевых условиях против личинок мух Насыров Ф.С. провел опыты с использованием 0,2 % - ный водной суспензии (3 – 5г/м²) которые показали смертность личинок в 81,25 % в лабораторных условиях и в полевых – 83,33 %
Против взрослых мух широко применяются репелленты и атриктанты. Более эффективными оказались использование репеллентов: 20 % в.э. оксамата, 5 – 10 % в.э. ТСН, терпеноидный репеллент, бензимин.
Получили применение и различные ловушки-приманки, так В. Репин и Д. Уснко (1986) рекомендуют в свиноводстве применять 0,5 % хлорофос, 0,5 % углекислый аммоний и воду с добавлением пищевых добавок (мясные, рыбные отходы и др), или 0,45 % пропоксура, 5 % сахар и воду наливают в банку, корытце и др. открытую посуду из расчета 0,2 – 0,4 м² поверхности пола. Через 10 – 15 дней их обновляют.
Одномоментное резкое снижение численности мух в помещениях достигается аэрозольной обработкой с помощью ДДВФ, получаемый безаппаратным способом.
В настоящее время для истребления мух широко применяется новая группа экологический безопасных синтетических перитроидов. Для насекомых пиретроиды являются остродействующим нейротропным ядом, которые в малых дозах оказывает быстрое парализующее действие. После обработки шерсного покрова животных, они сохраняют свойства до 3 – 4 месяцев. Применяют их различными способами: опрыскивание, ванны, ловышки с аттрактантами (описано выше), в форме ушных бирок, лент, ошейников. Особенно широко вошли в практику методы опрыскивания. Так, в условиях птицефабрик Капустина (1989) в присутствие птицы использовала аэрозоли перметрина, из расчета 2 – 4 мг/м³, З.Н. Нажмиддинова (1996), в птичниках бройлерного типа методом мелкокапельного выборочного опраскивания использовала 0,01 % в.э. К – отрина и бутокса, с инсектицидной активностью в течении 2-х месяцев.
В Казахстане в условиях птицефабрик Семипалатинского Прииртышья Булекбаева Л.Т. (1997) применила Блотик которая показала высокое ларвицидное действие в концентрации 0,25 – 0,1 %. Смертность личинок составила в среднем 100 – 91,5 %. Для уничтожения имагиальных стадии мух в помещениях с высокой численностью (цех мясо-костной муки) применен стомозан, в концентрации 0,5-0,25-0,1 %, из расчета 100 мл/м²,из дезинфаля. В свинарниках и на доильных площадках Ф.С. Насыров и Ж.М. Исимбеков (1991) успешно применили 0,04 % ципреметрин из расчета 100 мл/м².
Хорошие результаты показали опрыскивание животных 0,05 – 0,3 % в.э. перметрина из расчета 250 – 200 мл на животного ,0,05 – 0,3 % в.э. циперметрина. За границей практикуют на ряду с опрыскиванием, ушные бирки, ошейники, ленты импрегнированные синтетическими пиретроидами. В штатах Флорида в США против мух паразитирующих на крупно рогатом скоте применили ушные бирки и ленты импрегнированные флуцитринатом и фенвалератом, также успешно испытаны и применяются в практике серьги – терминаторы, в основе действующее вещество тиофосфат – диазинон.
В Англии ушные бирки импрегнированные флуцитринатом испытаны против Hydrotaea irritans. Нападение их снижается до 90 %, а M. Autumnalis на 76 %, действие инсектицида продлилась на 14 недель. В штате Флорида использовали ленты для ушей и хвостов крупно рогатого скота, В среднем они действовали 9 недель.
В этом направлении большие изыскания проведены зарубежными и отечественными ученными. На ряду с вышеуказаными методами имеются серьезные разработки по использованию биологических методов борьбы с мухами. Ряд зарубежных авторов посвятили изучению и изысканию биологических врагов среди живой фауны и описали их. Для борьбы с мухами в их преимагиальной стадии можно использовать – жесткокрылых стрекоз, пауков, клещей, перепончатокрылых и птиц.
Вышеуказанные методы регуляции численности мух направлены на уничтожение имаго и их личинок, однако на ровне с этими методами предлагаются и другие. Нетрадиционные методы предлагают использование насекомых в утилизации органических отходов животноводства и тем самым исключают возможность увеличение природной популяции
Среди капрофагов самую многочисленную и перспективную группу насекомых для массового разведения и использования с целью утилизации отходов и производства белка состовляют двукрылые.По литературным данным состав мух в экскрементах животных насчитывает свыше 50 видов, однако в массе встречаются только несколько видов. Так в куринном помете высокая плотность заселения субстрата отмечена у Eristalis arbustorum L., Themira putris L., Musca domestica L., Leptocera lugibris Hal., Protophormia terraenvae R, - D. Для целей получения кормового белка используют пока только Musca domestica, хотя и другие виды (особенно P. Terraenovae) представляют значительный интерес.
Сущность предлагаемого энтомологического метода получения кормового белка состоит в том, что органические отходы животноводства используются в качестве корма для личинок насекомых – капрофагов. Энтомологический метод в его современном виде включает три основных этапа: первый этап – получения яиц для засева навоза. Для переработки 1 т навоза требуется до 500 г яиц, поэтому продуктивность маточной культуры является одним из решающих одним из решающих факторов эффективности метода. Высокая продуктивность мух может достигнута в первую очередь, путем создания условия питания
Для содержания комнатной мухи используют садки, которые представляют каркас обтянутый марлей или капроновой сеткой. С одной стороны садка проделанна отверстие с длинным марлевым рукавом, через которое в садок помещают емкости с субстратом для откладки яиц, водой и емкости с кормом.
Кормление имаго мух. Имаго мух, также как и их личинки – полифаги. Они употребляют в пищу самые разнообразные вещества растительного и животного происхождения. Для поддержания нормальной жизнедеятельности мух, необходимо, чтобы в состав пищи входили углеводы и белки. Первые служат для поддержания общего обмена веществ, а вторые используются для развития яичников.
При выращивании мух многие ученные занимались этими вопросами и были предложены разнообразные составы кормов. В качестве белковой подкормки используется в основном сухое молоко и как углеводное свекловичный сахар или патока. При таком кормлении плодовитость одной самки за физиологический возраст составляет 472 ± 23,2 штук яиц. С целью повышения качества корма в протеиновом отношении, вместо сухого молока предложенно использование растерртых личинок комнатной мухи, которая способствует повышению плодовитости самок мух до 550 яиц на одну самку. Для этого на ровне с растертыми личинками комнатной мухи используют свекловичную патоку, буферный раствор поваренной соли, метабисульфид калия в соотношении масс. %: растертые личинки комнатной мухи 20 – 30; свекловичная патока 2 – 4; буферный раствор поваренной соли 66 – 68; метабисульфид калия 0,0003 – 0,0005. Смесь скармливают мухам, что повышает их плодовитость, а также увеличивает интенсивность откладывания яиц и повышает коэффициент использования корма.
Также в качестве белкового корма были использованы отходы инкубации, которая привело к снижению плодовитости до 263 шт яиц, однако отмечено удлинение продуктивного периода яйцекладки самок до 22 –х дней. Имаго комнатной мухи вскармливают в раздельных кормушках 30 – 35 % -й раствор отходов инкубации и 45 – 50 % водный раствор кормовой патоки.
Для сбора яиц различные авторы предлагают различные субстраты в зависимости от целей сбора. Для поддержания культуры используют субстрат состоящий из 100 г пшеничных отрубей, 10 г сухого молока и 100 мл воды. Также для этой цели предложено использование глиняных гранул. Оптимальный размер глиняных гранул для Musca domestica 2 – 2,8 мм. Для стимуллирования откладки самками комнатной мухи субстрат пропитывают смесью сухого молока (5 г), дрожжей (5 г) и насыщенным растворов карбоната аммония (5 мл) и воды (320 мл). Сбор яиц комнатной мухи осуществляли посредством промывки субстрата через ряд сит.
С целью механизации сбора яиц и кормления имаго мух предложено использование устройства которая состоит из емкости дно которого выполенно в виде прямых пазов (пазы глубиной не менее 2 – 3 мм), специальной емкости с привлекающей мух жидкостью. Подача жидкости в емкость контролируется специальным клапаном. Выход емкости представляет U – образную форму. /рисунок – 1, приложение/,.
Следующий этап – этап переработки навоза и получение биомассы личинок и зоокомпоста. Лучшими субстратами для развития личинок комнатной мухи являются куриный помет и свиной навоз с влажностью от 60 до 85 %. Личинок комнатной мухи выращивают в специальных культиваторах конструкции которых разнообразны. В практике в основном используются горизонтальные культиваторы которые состоят из нескольких лотков – культиваторов помещенные в один контейнер. Причем лотки изнутри имеют перегородки для равномерного обтекания обрабатываемого субстрата потоком воздуха, которые подаются в каждый лоток – культиватор по вмонтированным в их штуцерам. После заполнения лотков навозом его заселяют яйцами комнатной мухи и каждую установку подсоединяют к пневмощитку с помощью штуцеров. После завершения операции установку транспортируют в зону доращивания личинок / рисунок – 2, приложение/,.
Предлагается к использованию установка для переработки навоза личинками синантропных мух, установка имеет корпус с размещенными на ней емкостями для субстрата в виде конических тарелок с центральными отверстиями имеющие задвижку. При помощи патрубка в емкости падают субстрат и снизу в верх заполняется каждая емкость. После заполнения емкостей навозом по кромке емкости заселяются яйца комнатной мухи. Личинки по мере роста перемещаются по кромке к отверстию на дне емкости. В отличии от предыдущего устройства данное устройство предусмаривает и отделение выросших личинок от переработанного субстрата. Для этого в каждой емкости открывается задвижка, личинки передвигаясь падают через отверстие и увлекают за собой биоперегной. С помощью специального вентилятора остатки биоперегноя выдуваются в емкость для их сбора а личинки очищаясь от биоперегноя накапливаются в другой емкости /рисунок – 3, приложение/,.
Также культиваторы имеют и вертикальное расположение. Культивирование личинок осуществляется в вертикально расположенных перфорированных проницаемых для личинок емкостях при толщине слоя навоза в ней, равной глубине проникновения личинок в навоз, с подачей воздушного потока вдоль стенок емкости в период развития личинок и с прекоращением подачи воздушного потока в период сбора личинок. Причем в период развития личинок после снижения влажности субстрата ниже 76 – 78 % на его поверхность производят локальную подачу жидкой фракции, таким образом, чтобы образующиеся соседние зоны повышенной влажности не смыкались друг с другом.
Установка имеет корпус в верхней части которого расположен загрузочный люк, закрываемой герметической крышкой. Внутри корпуса расположена вертикальная перфарированная емкость, состоящая из раздвижных створок, которые крепятся к корпусу шарнирами. Размер перфарации обеспечивает прохождение через нее личинок синантропных мух, но не допускает проваливания через отверстия заключенного в емкости субстрата. Между створками и корпусом образованны вентиляционные коридоры. Створки благодаря шарнирам имеют возможность одна от другого отходить на некоторое расстояние. В нижней части корпуса на выходе перфарированной емкости расположено приемное устройство для перегноя, личинок и жидкой фракции, выполненное в виде ленточного транспортера, расположенного под углом 3 – 5 °. Под нижерасположенным концом ленточного транспортера расположена емкость для хранения жидкой фракции навоза, соединенная с насосом для подачи жидкой фракции на поверхность субстрата, который сообщен с патрубком трубопроводом.
Как было уже вышесказано данное устройство на равне с выращиванием личинок предусматривает и их отделение от переработанного субстрата и это один из положительных сторон устройства. Для отделения выросших личинок в емкость прекращают подачу воздушного потока. Под воздействием ряда факторов – накопление углекислого газа, дефицит кислорода, биотермического процесса и повышенной двигательной активностью личинок в фазе предкуколки они выходят на поверхность перфарированной емкости и падаю.т с нее на приемное устройство, который подает их к месту переработки /рисунок – 4, приложение/,.
Одним из приемов увеличения выхода личиночной биомассы является обогащение перерабатываемого субстрата. Известна питательная среда для выращивания личинок синантропной мухи, состоящая из навоза, к которому для увеличения выхода биомассы добавляют содержимое рубца жвачных животных при следующем соотношении компонентов, масс. %:
Содержимое рубца 5 – 30
Навоз остальное.
При включении в среду содержимого рубца в количестве 5, 15, 30 % выход биомассы личинок составляет 12, 17,1 и 112 % к массе питательной среды. Положительное действие содержимого рубца связанно с наличием в ней микроорганизмов, вырабатывающих ферменты разлагающие клетчатку.
Однако процесс сбора содержимого рубца очень трудоемкий, требует изменения технологии послеубойной разделки животного, а также больших транспортных расходов на доставку свежего сырья с мясокомбината в цех биологической переработки навоза.
Также с целью увеличения выхода биомассы личинок в субстрат дополнительно добавляют препараты целлюлозолитических и пектолитичесских ферментов, в частновти целловеридин и пектофостидин, причем компоненты берут в следующем соотношении, масс. %:
Навоз 99,00 - 99,50
Целловеридин 0,25 - 0,50
Пектофостидин 0,25 - 0,50.
Питательная среда при добавлении целловеридина и пектофостидина в количестве 0,25 – 0,50 масс. % кождого увеличивает выход личинок на 27 % и среднюю массу пупарием на 12 %.
Завершающим этапом данного метода является отделение выросших личинок от переработанного субстрата. Процесс отделения основан на самостоятельной миграции личинок от переработанного субстрата под воздействием отрицательного фототаксиса личинок. С этой целью предлогается устройство состоящее из сетчатого замкнутого транспортера над которой размещаются источники света. Под верхней ветвью сетчатого транспортера расположен бункер для сбора отделившихся личинок, на выходе которого установлен пневмосепаратор соединенный с транспортером для перемещения отделенных личинок. На выходе сетчатого транспортера устонавливается цилиндрическая щетка под которым размещен бункер для сбора переработанного субстрата. Для отделения личинок переработанный субстрат с выросшими личинками вываливается на поверхность сетчатого транспортера и равномерно размещают ее слоем 10 мм по поверхности транспортера. Под воздействием света личинки уходят в глубь субстрата и проваливаются через сетчатый транспортер в бункер для личинок. Личинки падая из бункера посредством пневмосепаратора очищаются от остатков субстрата.Переработанные в удобрение экскременты с сетчатого транспортера сбрасываются в бункер для удобрении, которые норией и транспортером подаются в склад /рисунок – 5, приложение/,.
В предлогаемом следующем методе отделение личинок производят под воздействием давления на субстрат и тепла. Для этого субстрат загружают слоем до 15 – 30 см в специальную кмкость, прижимая сетчатый экран к поверхности субстрата давлением 100 – 350 кг/м³ и осуществляя внешнее тепловое воздействие нагреванием его до температуры 50 – 53 ° С. После прохождения личинок через сетчатый экран их снимают с поверхности экрана. Предлогаемый способ позводяет обеспечить полноту отделения личинок от субстрата до 98 % и следовательно увеличить выход биомассы личинок. К тому же полученная личиночная масса содержит всего 2 % примесей.
Отделение личинок также может проводится и под воздействием электрического поля плотностью 50 – 70 А/м².Предлогаемый способ обеспечивает как утверждают авторы полного отделения с переработанного субстрата личинок со снижением затрат на злектроэнергию в 13 – 17 раз.
Также отделение личинок может проводится и используя вращающий барабан. Устройство состоит из дозатора для связующего материала. Вращающаяся труба имеет на выходе решетку и источник тепла в виде каллорифера. Дозаторами в шнековую камеру с одной стороны подают переработанный субстрат с выросшими личинками, а с другой стороны смешивая с переработанным субстратом подают жидкий навоз. Шнек всю образующую массу подает в трубу, благодаря чему образуются окатыши диаметром 10 – 20 мм. При непрерывном вращении трубы окатыши движутся к выходу трубы, калорифер во внутрь трубы подает горячий воздух, под воздействием которого личинки выползают из окатышей и просыпаются из отверстия трубы в специальную емкость, а субстрат сбрасывается с трубы в емкость для их сбора /рисунок – 6, приложение/,.
При работе в полевых условиях для сбора пупариев предлагается очень удобное устройство которое состоит из двух частей – корпуса и поддона. Поддон устанавливается внутри корпуса на специальных ножках, а края корпуса выполненны загнутыми во внутрь краями для предотвращения миграции личинок из корпуса устройства. Устройство используют следующим образом: на поверхность поддона размещают субстрат с личинками на стадии предкуколки. Закончившие питание личинки мух имеют очень активную подвижность и способны покидать субстрат. Покидая ее они проваливаются на дно устройства, в которую заранее насыпают сухой очищенный песок. Попадая туда личинки окукливаются и их легко можно выбрать с помощью почвенных сит /рисунок – 7, приложение/,.
В настоящее время накоплен значительный опыт использования продуктов переработки отходов животноводства энтомологическим методом. Биомасса личинок в свежем и переработанном (например в высушенном) виде может найти широкое применение в различных областях сельского хозяйства. Так, пищевая ценность муки из личинок не уступает ценности мясо-костной муки в основном рационе кормления животных. Личинки мух могут с успехом применятся и в рыбоводстве при выращивании ценных пород рыб заменяя личинок мотыля. В звероводстве личинок мух целесообразно применять вместо мяса в рационе хищных зверей. Лиофолизированная мука из личинок мух может успешно применена в качестве заменителя дефицитных компонентов искусственных питательных сред для разведения полезных насекомых энтомофагов.
0 комментариев